Использование глутаральдегида — Новости — Только химические вещества для фтора

«Используйте один» стерилизационное дезинфицирующее средство, дубильные вещества, древесные консерванты, лекарственные средства и полимерное синтетическое сырье.

«Использовать два» в качестве фиксированного агента для исследования микроскопии «Использовать три» и хромированного кожевенного крупного рогатого скота, свиней, кожи овечьей одежды, кожи перчаток. Подходит для низкой температуры (менее 0 ℃), запечатанной во избежание сохранения света. Этот продукт обладает сильным раздражителем для глаз и кожи, должен носить очки, перчатки и другое защитное снаряжение.

Нельзя смешивать с фенолосодержащим растительным дубильным агентом и синтетическим дубильным агентом.

«Использовать четыре» Глутаральдегид — это химический антисептический фунгицид с низкой токсичностью, положения Китая могут использоваться для овощей, сохранения фруктов, максимального использования 0,05 г / кг, остатка не превышает 5 мг / кг. «Использовать пять» глутаральдегид используется для дезинфекции, фармацевтического, дубления, в качестве электронного микроскопа и трубки цветного изображения пленочного агента. Этот продукт используется для производства щелочного гидрохлорида, центрального возбуждающего препарата, горного терьера. Глутаральдегид — быстродействующий химический стерилизующий агент с широким спектром спектра, при комнатной температуре низкая концентрация водного раствора глутаральдегида может быть активной для многих микроорганизмов, бактерий размножающегося типа, вирусов, микобактерий, патогенных грибов и бактериальных спор обладают высоким стерилизационным эффектом, и низкая токсичность для людей, известно, что использование формальдегида в начале этого столетия, использование 30-х химического дезинфицирующего средства, такого как этиленоксид, глутаровый альдегид является третьей вехой. В 1973 году Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) подталкивает три продукта в качестве вирусного дезинфицирующего средства типа В.

В известном альдегиде глутаровый альдегид является лучшим белковым сшивающим агентом, сшивание характеризуется высокой активностью, быстрой реакцией, высоким связыванием, стабильным продуктом, сильной устойчивостью к кипящей воде, кислотой и ферментами, поэтому кожа с дублением глутаральдегида обладает отличной устойчивостью пота , термостойкость, мыло и другие свойства. «Использование шести» глутаральдегида известно как третья веха в истории химических дезинфекционных и стерилизационных агентов после дезинфекции формальдегида и этиленоксида.

В качестве жидкости для производства серии бактерий глютаральдегида бактерицид, глютаральдегид (111-30-8), бактерицид имеет характеристики с низким содержанием метанола, отсутствие изменений и отсутствие накопления токсичности и широко используется в стерилизации, фармации и других отраслях. Глутаровый альдегид (111-30-8) является эффективным дезинфицирующим средством с широким спектром, высокой эффективностью, низкой токсичностью, малой коррозией к металлам, небольшим влиянием на органическое вещество и хорошей стабильностью. Дезинфекция и стерилизация прецизионных инструментов для медицинских приборов и влагостойкая термообработка. Его стерилизационная концентрация 2%, город Глутаральдегид главным образом включает: 2% щелочного глутаральдегида и 2% повышенного кислотного глутаральдегида двух видов. Щелочный глутаровый альдегид обычно используется в стерилизации медицинского устройства, прежде чем его следует добавить в соответствующее количество бикарбоната натрия, равномерно встряхнуть, покоя в течение 1 часа, чтобы определить значение рН.

Бактерицидное действие глутарового альдегида является самым сильным, когда ph составляет 7,5-8,5. Стерилизация глутаральдегида (111-30-8) является ролью его мономера, когда рН раствора достигает 6, эти мономеры имеют тенденцию к полимеризации, причем рост фазы этой полимеризации происходит очень быстро, раствор может выпадать в осадок , образование полимеров будет терять бактерицидный эффект. Таким образом, основной глутаровый альдегид является относительно нестабильным дезинфицирующим средством, 2% -ный глутаральный альдегид кислоты является полиоксиэтиленовым эфиром жирного спирта в качестве усиливающего агента, повышает роль стерилизации глутаральдегидом.

Его ph меньше 5, бактерицидный эффект бактериальной почки слабее, чем щелочной глутаровый альдегид, но инактивация вируса сильнее щелочного глутарового альдегида, стабильность лучше, чем основной глутаровый альдегид, может использоваться в течение 28 дней подряд , «Использовать семь». Глутаральдегид является наиболее важным насыщенным алифатическим алифатическим альдегидом с двойной цепью после этилового альдегида. Глутаровый альдегид известен как третье поколение химического агента стерилизации, но также хороший агент для загара, агент для сшивания белка, высокоэффективное дезинфицирующее средство для стерилизации, биологические ферменты и средство для отверждения клеточной ткани. Широко используется в области медицины, здравоохранения, нефтехимии, легкой промышленности и научных исследований.

Укрветпромпостач — БИОКЛИН БИОЦИД

Описание: прозрачная жидкость желтоватого цвета.

Состав: 100 г препарата содержит действующие вещества (%): дидецилдиметиламония хлорид — 4,0%; дидецилдиметилбензиламония хлорид — 8,5%; глютаральдегид — 5%; изопропанол — 15%; воду до 100%.

Фармакологические свойства: препарат обладает бактерицидным (Staphylococcus aureus, Streptococcus faecalis, Pscudomonas acruginosa, E.coli, Mycobacterium avium, Mycobacterium tuberculosis, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis, Brucella abortus, Salmonella enteriditis), фунгицидным (Candida albicans, Trichophyton spp., Microsporum gruseum ), спороцидным (Bacillus Antracis) и вирулицидным (вирус болезни Ауески, чумы свиней, миксоматоза, ротавирусы) действиями.

Применение: препарат применяется для мытья и дезинфекции животноводческих и птицеводческих помещений, инкубаториев, пунктов искусственного осеменения, транспортных средств, поверхностей, объектов и оборудования, подлежащих ветеринарному надзору, для заполнения дезбарьеров.

Способ применения и дозы: дезинфекцию проводят после тщательной механической и санитарной очистки поверхностей объектов обеззараживания методом протирания, орошения и туманообразования. Туманообразование можно проводить с использованием туманогенераторив холодного тумана. После экспозиции остатки препарата разрушаются факторами внешней среды (не нужно смывать). Для дезинфекции используют водные растворы препарата. Для профилактической дезинфекции используют 0,25%-нный водный раствор препарата при норме расхода 0,2-0,25 л на 1 м² площади. Экспозиция составляет 30-60 минут.

Для вынужденной дезинфекции при инфекционных заболеваниях бактериальной и вирусной этиологии и заключительной дезинфекции используют 0,5%-нный водный раствор препарата при норме расхода 0/2-0,25 л на 1 м² площади. Экспозиция составляет 60-120 минут.

Для обеззараживания поверхностей за режимом туберкулеза используют 1%-1,5% растворы препарата (100-150 мл препарата на 10 л воды). Экспозиция составляет от 3 до 6 часов.

Для заключительной дезинфекции методом туманообразования используют водный раствор препарата (0,75 л препарата — 4 л воды/1000 м³ объема). Рабочий раствор распыляют при выключенной вентиляции со временем экспозиции — 2-3 часа. Места возможного накопления остатков дезсредства (кормушки, поилки) промывают водой.

Для заполнения дезбарьеров и дезковриков используют 0,5% водный раствор средства.

Менять раствор по мере загрязнения или один раз в неделю.

Противопоказания: не установлено.

Предостережения: не применять в присутствии животных и птицы. При использовании препарата в термическом туманогенераторе появляется острый неприятный запах. После обработки помещения необходимо обязательно проветрить. Не совместим с мылом, анионными поверхностно-активными веществами, концентрированными растворами хлора, окислителями.

Форма выпуска: канистры из полиэтилена емкостью 5; 10; 30 кг.

Хранение: хранить в таре производителя при температуре от 5°С до 25°С в сухих темных хорошо вентилируемых, складских помещениях в защищенном от прямого солнечного облучения месте. Не допускать замораживания.

Срок хранения: 3 года.

Дезинфекция эндоскопа с помощью автоматизированного эндоскопического репроцессора

Дезинфекция эндоскопов является ответственным этапом подготовки инструмента к работе. От правильности выполнения дезинфекции зависит состояние здоровья и безопасности пациента, а в некоторых случаях и медицинского персонала. После проведения любой эндоскопической процедуры обязательно проводится тщательная дезинфекция эндоскопа, для исключения возможности передачи возбудителей инфекций.

Перед тем как приступить к обсуждению основной темы, разберём основы, которые часто сбивают с толку. Речь идёт о итоговой разнице в результатах после проведения стерилизации/ дезинфекции эндоскопа. Часто данные понятия путают, хотя разница очевидна.

Стерилизация предполагает полное удаление всех видов живых микроорганизмов. Её методы включают стерилизацию паром высокого давления, химическую и газовую. Но стерилизация противопоказана для обработки гибких эндоскопов, так как может повлечь за собой порчу всего аппарата, поэтому при его обработке используется именно дезинфекция.

Дезинфекция эндоскопа состоит из комплекса мероприятий, приводящих к уменьшению или уничтожению микробов, возбудителей инфекций и разрушению токсинов на объектах внешней среды, до того состояния, при котором инфекция не передаётся. 

3 основных вида дезинфекции:

1. Дезинфекция эндоскопов высокого уровня — убивает все микроорганизмы, кроме некоторых бактериальных спор; 

2. Дезинфекция эндоскопов среднего уровня — удаляет микробактерии, вегетативные бактерии, большинство вирусов и грибки, за исключением бактериальных спор; 

3. Дезинфекция эндоскопов низкого уровня — удаляет большинство растительных бактерий и некоторые грибки.

Гибкий эндоскоп требует высокого уровня дезинфекции, это могут обеспечить 2 существующих метода дезинфекции эндоскопа:

1. Автоматическая дезинфекция эндоскопа, с использованием машины;
2. Ручная дезинфекция эндоскопа.

У каждого из методов имеются свои плюсы и минусы. Если говорить об автоматической дезинфекции, то у нее преимуществ гораздо больше. Это и качественная обработка, и интенсивная промывка, и хорошая продувка каналов эндоскопа. Кроме того данный метод дезинфекции эндоскопов требует меньше персонала и затрачиваемого времени, по сравнению с ручной дезинфекцией эндоскопа. Однако это дорогое оборудование, требующее регулярного технического обслуживания, при неверной эксплуатации способное стать источником загрязнения.

Ручная дезинфекция эндоскопа, если выполняется надлежащим образом, может показать тот же эффект обработки, что и при автоматической дезинфекции эндоскопа. Но стоит учитывать, что при обработке эндоскопов вручную, медицинский персонал подвергается воздействию раздражающего и токсичного дезинфицирующего раствора. И, для достижения требуемого уровня дезинфекции эндоскопа, необходимо гораздо больше времени на обработку, а также больше персонала, отвечающего за неё. И это с учетом того, что требуемый дезинфицирующий эффект не  всегда достигается. Поэтому в наши дни часто используются автоматизированные эндоскопические репроцессоры.

К слову, даже с использованием автоматизированного аппарата требуется первоначально вручную минимально подготовить эндоскоп перед помещением в автоматизированный репроцессор. Подготовка включает: очистку тубуса рабочей части от имеющейся слизи и прочистку щеткой инструментального канала с дистальным концом.  А также, перед тем как поместить эндоскоп в аппарат, необходима тщательная очистка рук. 

Каждый из ранее описанных методов дезинфекции эндоскопов состоит из 5 этапов обработки.

1. Предварительная очистка;
2. Очистка;
3. Дезинфекция;
4. Ополаскивание;
5. Сушка;
6. Хранение.

Для проведения дезинфекции эндоскопа, медсестры должны использовать индивидуальные средства защиты, чтобы обезопасить себя от загрязнений и уменьшить воздействие химических веществ, таких как дезинфицирующие растворы, на кожу и слизистые. Рекомендуется использовать

Дезинфицирующие средства высокого уровня, для проведения дезинфекции эндоскопа, включают:

• Глутаральдегид;
• Ортолфтальдегид;
• Перуксусную кислоту / перекись водорода;
• воду с электролизированной кислотой.

Для достижения эффекта высокого уровня дезинфекции эндоскопов

Стоит отметить, что в автоматизированном эндоскопическом репроцессоре канал с лифтом уязвим для размножения бактерий, поэтому автоматической дезинфекции эндоскопа может быть недостаточно. В этом случае для удаления загрязнений сзади или сбоку от лифта с помощью щетки или инъекционных игл требуется ручная очистка. Учитывая химическую нестабильность дезинфицирующего средства, оставшиеся органические вещества в канале эндоскопа или оставшаяся вода в эндоскопе могут снизить уровень концентрации дезинфицирующего средства в автоматизированном репроцессоре эндоскопа, поэтому уровень концентрации следует проверять

Необходимый материал: питьевая вода.

Этот шаг полностью удаляет дезинфицирующее средство, которое остается на поверхности эндоскопа и канала. Используется только питьевая вода. Количество воды, необходимое для соответствующего полоскания, после дезинфекции эндоскопа, примерно в три раза больше, чем площадь, которую необходимо промыть.

Необходимые материалы: сжатый воздух, этиловый или изопропиловый спирт.

После тщательной промывки эндоскопа все его части разбираются. Оставшаяся вода или влага могут стать резервуаром для роста микроорганизмов, поэтому все части необходимо высушить, чтобы предотвратить передачу бактерий и дальнейшее распространение инфекции. Сжатый воздух подается в каждый канал для удаления воды изнутри. Затем поверхность эндоскопа моют мягкой тканью, и от 70 до 90% этилового или изопропилового спирта выливают во все его каналы, прежде чем сжатый воздух вдувают в них для сушки. Наконец, эндоскоп вертикально хранится в шкафу. Все его съемные части, такие как воздушный / водяной клапан, всасывающий клапан и водонепроницаемая крышка, хранятся в разобранном виде. Кабинет ежедневно вытирают 70% спиртом.

Факторы которые необходимо учитывать при выборе: 

• Цену;
• Совместимость с разными производителями гибких эндоскопов
• Стоимость обслуживания;
• Удобство эксплуатации;
• Функцию очистки воды;
• Типы дезинфицирующего средства, которые можно использовать с ним;
• Время обработки,
• Способность печатать индикаторы обработки;
• Функция ультразвуковой дезинфекции эндоскопа;
• Функция вентиляции дезинфицирующего средства;
• Функция сохранения тепла;
• Количество эндоскопов, которые он может обработать одновременно;
• Функция автоматического тестирования на утечку;
• Функция автоматического контроля блокировки каналов;
• Функция автоматической очистки;
• Тип монтажа.

Дезинфекция эндоскопов путем использования автоматизированного репроцессора дает уверенность пациенту и лечащему врачу, в том, что для обследования используется оборудование, прошедшее качественную дезинфекцию высокого уровня, обеспечивающее безопасность и более четкую картину диагноза.

 Подобрать автоматизированный репроцессор, на основе Ваших потребностей, помогут специалисты отдела продаж ООО «Юни-тек».

Если же Ваш гибкий эндоскоп вышел из строя, специалисты «Юни-тек Сервис» его готовы отремонтировать.
Дефектация проводится бесплатно. Предоставляем гарантию на ремонт гибких эндоскопов до 6 месяцев.

Пользователи, которые интересовались данным обзором смотрели также:

Влияние дезинфицирующего раствора анолита на стабильность геометрических форм силиконовых оттисков

□□34716Ё

На правах рукописи

МАНЕЛЯК ПАВЕЛ ИВАНОВИЧ

ВЛИЯНИЕ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩЕГО РАСТВОРА АНОЛИТА НА СТАБИЛЬНОСТЬ ГЕОМЕТРИЧЕСКИХ ФОРМ СИЛИКОНОВЫХ

ОТТИСКОВ

Специальность 14.00.21 — стоматология

АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Воронеж — 2009

003471665

Работа выполнена в Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Воронежская государственная медицинская академия им. Н.Н.Бурденко Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию».

Научные руководители: доктор медицинских наук, профессор Каливраджиян Эдвард Саркисович, доктор химических наук Пономарева Наталья Ивановна.

Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор Харитонов

Юрий Михайлович

кандидат медицинских наук, доцент Некрылов Валерий Алексеевич

Ведущая организация:

Защита состоится «_»_2009г., в «_» часов на

заседании диссертационного совета Д 208.009.01 при Государственном образовательном учреждении высшего профессионального образования «Воронежская государственная медицинская академия им. H.H. Бурденко Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» по адресу: 394036, Россия, г. Воронеж, ул. Студенческая, 10.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Воронежской государственной медицинской академии им. H.H. Бурденко Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию».

Автореферат разослан «_»_2009г.

Ученый секретарь диссертационного совета

Глухов A.A.

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования

Ассортимент антимикробных препаратов для дезинфекции в последние годы существенно расширился. В России разрешено применение и практически используется более 400 препаратов для дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации, в том числе и для дезинфекции оттисков. Однако, возрастает количество штаммов микроорганизмов, устойчивых к целым классам химических соединений (Некрылов В.А., 1994; Пономарева Н.И., 2008). Периодические плановые замены одних антимикробных средств на другие не решают проблему инфекций (Щербаков А.С., 1992; Саппог С, 1994).

В настоящее время широкое распространение для дезинфекции оттисков получили дезинфицирующие растворы на основе глутаральдегида, но общеизвестна его высокая токсичность, возможность образования агрессивных взвесей и неблагоприятное влияние на соматические клетки (Харитонов Ю.М., 1990). Именно поэтому его применение законодательно запрещено в Англии с 01.05 2002 года. В России продолжается реклама и продажа препаратов на его основе для дезинфекции оттисков. Одновременно с этим отсутствуют универсальные дезинфицирующие средства, применяемые в ортопедической стоматологии и нет результатов исследований по влиянию данных средств на размеры отаисков, их качественные характеристики и химический состав поверхности оттисков после обработки дезинфицирующими средствами (Каливраджиян Э.С., 2006).

Исходя из вышеизложенного, изучение влияния раствора электрохимически активированной воды в качестве дезинфицирующего средства для оттисков является актуальной и важной задачей.

Цель исследования

Повысить эффективность дезинфекции оттисков и дать сравнительную оценку влияния дезинфицирующих средств на отгискные материалы.

Задачи исследования

1.Изучить влияние раствора анолита на геометрическую стабильность силиконовых оттисков.

2.йзучить и провести сравнительный анализ влияния дезинфицирующих средств на качество поверхности силиконовых оттисков.

3.Дать сравнительную оценку химического состава поверхности силиконовых оттисков, обработанных различными дезинфицирующими средствами.

Научная новизна

Изучено влияние электрохимически активированной воды на геометрические размеры оттисков.

Исследовано влияние раствора анолита на качество поверхности силиконовых оттисков.

Проведено исследование химического состава поверхности оттисков после обработки раствором глутаральдегвда и анолита с использованием рентгеноспектрального микроанализа.

Дан сравнительный анализ химического состава силиконовых оттисков после дезинфекции раствором глутаральдегида и анолита.

Практическая значимость работы

В результате проведенных исследований предложена и доказана возможность использования раствора электрохимически активированной воды для дезинфекции силиконовых оттисков групп А и С без существенного изменения геометрических размеров и качества поверхности.

Для изучения влияния электрохимически активированной воды на оттискные материалы предложено: измерение линейных размеров оттисков до и после дезинфекции с помощью стандартной металлической матрицы и оптического микроскопа ММИ-2; изучение качества поверхности оттисков до и после дезинфекции при использовании сканирующего электронного микроскопа ]8М-6380 ЬУ; анализ химического состава оттисков после

обработай раствором глутаральдегида и анолита с помощью программы рентгеноспектрального микроанализа.

Изучена и отработана методика анализа влияния электрохимически активированной воды на отгаскные материалы, которую можно предложить для практического использования.

Основные положения, выносимые на защиту

1 .Сравнительная оценка и результаты влияния дезинфекции на размеры силиконовых оттисков.

2.Результаты исследования качества поверхности силиконовых оттискных материалов.

3.Влияние растворов анолита и глутаралвдегвда на химический состав поверхности силиконовых оттисков.

Апробация работы

Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на совместном заседании кафедры ортопедической стоматологии ВГМА им.Н.Н.Бурденко, кафедры стоматологии детского возраста ВГМА им.Н.Н.Бурденко, кафедры ортопедической стоматологии ИПМО ВГМА им.Н.Н.Бурденко протокол № 9 от 27.06.2008 г.

На региональной научно-практической конференции «Компьютерные технологии в ортопедической стоматологии СЕЯЕС» 14-15 декабря 2007 года, г.Воронеж.

На научно-практической конференции «Особенности использования эластичных оттискных масс в клинике ортопедической стоматологии» 04.10.2007 года, г.Воронеж.

Публикации

По теме диссертационной работы опубликовано 8 научных работ, из них 2 в центральной печати, 1 из которых в издании, включенном в перечень ВАК РФ, 2 — в международной печати.

Объем и структура диссертационной работы

Диссертационная работа изложена на 126 страницах машинописного текста, состоит из введения, трех глав, обсуждения полученных результатов, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка литературы и приложения. Работа иллюстрирована 20 таблицами, 37 рисунками. Список литературы содержит 206 источников, в том числе 66 отечественных и 140 зарубежных авторов.

Внедрение в практику результатов исследования

Результаты исследований внедрены в работу школы-семинара молодых ученых «Технологии 3 тысячелетия», МУЗ ГО г.Воронежа «Стоматологическая поликлиника №2», МУЗ ГО г.Воронежа «Стоматологическая поликлиника №6», МУЗ ГО г.Воронежа «Стоматологическая детская поликлиника №2».

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Материалы и методы исследования

Силиконовые отшскные материалы отличаются высоким качеством, разнообразием физико-механических характеристики форм выпуска, поэтому для исследования были выбраны «Speedex» и «Take 1». Нам представлялось важным на примере типичных представителей материалов выявить закономерности, связанные с использованием оттискных материалов. Безусловно, что полученные результаты в большей степени характеризуют непосредственно выбранные для исследования материалы.

В настоящее время в клинике ортопедической стоматологии широко применяются поливинилсилоксановые и полисилоксановые оттискные материалы. Поэтому целью данного исследования явилось изучение влияния дезинфекции оттисков из материалов «Speedex putty», «Speedex creem» light body, «Take 1» regular-set, «Take 1 putty», обработанных раствором электрохимически активированной воды на стабильность линейных размеров, шероховатость и качество поверхностей. Для проведения эксперимента было

использовано дезинфицирующее средство на основе электрохимически активированной воды, полученное с помощью установки СТЕЛ. Оно обладает бактерицидным, вирулицидным, фунгицидным, спороцидным, туберкулоцидным действием. Обеззараживание оттисков, из исследуемых оттискных материалов, проводилось по методике для дезинфицирующих средств на основе электрохимически активированной воды: промывание проточной водой в течение 1 минуты, дезинфекция погружением в раствор электрохимически активированной воды на 15 минут для оттисков из силиконовых материалов, вновь промывание водой в течение 1 минуты, затем получение образцов оттискных материалов.

Влияние дезинфицирующих средств на отгаскные материалы определяли опосредованно, путём измерения разницы между оттисками и стенками стандартной металлической матрицы. Оттиски получали по стандартной металлической матрице.

Для получения идентичных образцов нами была использована стандартизированная металлическая форма, которая выполнена из стали марки ШХ-15. Основание модели имеет вид трапеции (150 х 100 х 20 мм). Состоит из двух разборных частей, в одной из которых сделано четыре стандартных прорези шириной 5 мм.

Для выполнения измерений использовался оптический микроскоп марки ММИ-2 №692286 (ГОСТ 8074-56), с нанесенными ориентирами в поле зрения.

Оттискные материалы замешивались строго по инструкции. Силиконовыми материалами получали однослойные оттиски тоже в соответствии с описанными стандартами. Каждым из перечисленных материалов было получено по 30 образцов, из них 15 (опытных) подвергались обработке дезинфицирующим раствором электрохимически активированной воды, а 15 служили контролем.

Пространственные изменения оттисков вследствие их набухания или усадки, а также воздействия дезинфицирующего вещества вначале на поверхность оттискного материала, изучали с помощью микроскопа ММИ-2.

Для получения идентичных оттисков использовался материал одной партии. Измерение оттискных материалов производили через 1 час после их получения. Для измерения исследуемых расстояний использовали оптический микроскоп ММИ-2.

В ходе эксперимента выполнено 4 серии опытов. Для каждого оггискного материала получали контрольную группу (дезинфекция не проводилась) и опытную группу (оттиски дезинфицировались раствором электрохимически активированной воды).

Статистическая обработка. полученных результатов произведена с помощью дисперсионного анализа. Вычислены статистические параметры выборок: среднее, дисперсия, среднеквадратичное отклонение, ошибка выборочного среднего, коэффициент вариации. При постановке исследований с использованием дисперсионного анализа суммарную дисперсию раскладывали на дисперсию воспроизводимости и дисперсию, обусловленную изменением одного фактора. Количество опытов определяли числом уравнений фактора и числом параллельных измерений. Для оценки значимости различия между средними использовали ранговый критерий Дункана.

Как уже упоминалось, дезинфицирующие средства могут оказывать негативное влияние на размеры оттисков, точность и шероховатость отлитых по ним оттискных материалов. Известно, что шероховатость поверхности оттисков зависит от вида оттискного материала, от наличия активаторов или ингибиторов.

Остаток дезинфицирующего средства на поверхности оттиска может оказывать влияние на полимеризацию оттискного материала вследствие своей химической активности и агрессивных свойств. При этом дезинфицирующее средство может разрушать поверхность оттиска, изменять структуру оттискного материла, проникая на большую или меньшую глубину внутрь последнего, а после выступать на поверхности оттиска. В результате этого возможно изменение физико-механических свойств оттискного материала. Для изучения влияния дезинфицирующих средств на отгискные материалы

проводилось измерение: расстояния между стандартной заготовкой и оттискным материалом, сравнительное изучение шероховатости поверхности оттисков, структуры оттискного материала после дезинфекции, в сравнении с контрольными, с помощью электронного микроскопа ГЕОЬ1БМ 6380 1Л/.к, Шеи. Для профиля вдоль отрезка кроме этих параметров также будут присутствовать:Иг, вт, БтЬ, Бт1.

1 .Средняя шероховатость (11а) — этот параметр определяется как среднее арифметическое отклонение профиля от средней наклонной прямой или плоскости (средней линии профиля, средней плоскости), проведенной методом наименьших квадратов.

¿.Среднеквадратичная шероховатость (!&}) характеризует среднеквадратичное отклонение профиля поверхности относительно базовой линии. Ия имеет значение в применении к оптике, где от этого параметра зависят оптические свойства поверхности.

3 .Параметр асимметрии (Иэк). Функция распределения вероятности дает вероятность того, что профиль имеет заданную высоту Z.

4.Мера эксцесса (Яки). Этот параметр характеризует ширину пиков или впадин, т.е. отклонение гистограммы от Гаусовой формы.

Для изучения микрокристаллической структуры пространства поверхностного слоя оттисков были получены опытные образцы из силиконовых материалов группы А и С, после их дезинфекции в растворе электрохимически активированной воды. Для контроля были исследованы образцы оттискных материалов, которые не Подвергались дезинфекции.

Исследование структуры поверхностного слоя оттискного материала проводили на фотоизображениях, полученных при увеличении в 100, 200 и 2000-х. Для возможности проведения сравнительного анализа на фотоснимках указана цена деления каждого снимка. В ходе эксперимента проведено

изучение 40 оттисков (20 из опытной серии и 20, из контрольной). Оттиски получены из исследуемых материалов «Speedex putty», «Speedex сгееш» light body, «Take 1» regular-set, «Take 1 putty». С каждого оттиска получено три фотоизображения при увеличении в 100,200 и 2000.

Результаты исследования структуры поверхностного слоя оттискного материала показали, что различий между опытной и контрольной серией не обнаружено, модели имеют четкие границы, и соответствующую структуру.

Результаты собственных исследований и их обсуждение

В контрольной серии было измерено 15 образцов, полученных из «Speedex putty» без дезинфекции и 15 с дезинфекцией. Средние размеры измеряемых величин представлены в таблице 1.

Таблица 1

Измерение размеров образцов полученных из «Speedex putty» (мкм)

Параметр Измеряемая разница

Номер опыта Контроль После дезинфекции

Сумма 232,650 232,660

Среднее 15,510 15,511

Сумма квадратов 3608,402 3608,712

При сравнении размеров контрольных образцов с размерами образцов после дезинфекции анолитом не обнаружено статистически достоверных различий. После дезинфекции 15 оттисков погружением в раствор электрохимически активированной воды на 15 минут разница между металлической матрицей и дезинфицированными оттисками имела следующее размеры: 15,0+0,5мкм, при этом отличие от контрольного размера составило +0,001мкм, различие статистически достоверно.

Таким образом, статистически достоверные отличия опытных образцов от контрольных выявлены при измерении между металлической матрицей и оттискными материалами.

После измерения контрольной серии образцов, полученных без дезинфекции раствором электрохимически активированной воды из «Speedex creem» light body и статистической обработки данных, получены следующая разница между матрицей и оттискным материалом: 15,0+0,5 мкм, при этом отличие от контрольного размера составило +0,001 мкм, различие статистически достоверно (табл.2).

Таблица2

Измерение размеров образцов оттискных материалов полученных из

«Speedex creem» light body (мкм)

Параметр Измеряемая разница

Номер опыта Контроль После дезинфекции

Сумма 232,650 232,660

Среднее 15,510 15,511

Сумма квадратов 3608,402 3608,712

Сравнение полученных средних данных опытной серии с результатами измерений контрольной показало следующее: статистически достоверные различия в контрольной серии опытов составили — 15,511 мкм, а в опытной сери — 15,510мкм. Анализ средних расстояний между средними величинами контрольного и опытного образцов показал, что статистически достоверные различия являются не существенными.

При измерении контрольной серии образцов оттискных материалов, полученных без дезинфекции из «Take 1» regular-set, и последующей статистической обработки результатов измерений по методу дисперсионного анализа получены следующие результаты: 5,0+0,5мкм. После погружения образцов в дезинфицирующий раствор электрохимически активированной воды, полученная разница между образцом и матрицей составила: 0,001 мкм (табл.3).

Таблица 3

Измерение размеров образцов отгаскных материалов полученных из «Take 1» regular-set (мкм)

Сумма 82,650 82,660

Среднее 5,510 5,511

Сумма квадратов 455,402 455,512

Сравнение полученных средних данных опытной серии с результатами измерений контрольной показало следующее: статистически достоверных различия в контрольной серии опытов составили — 5,510мкм, а в опытной серии — 5,511мкм. Анализ средних расстояний между средними величинами контрольного и опытного образцов показал, что статистически достоверные различия являются не существенными

При измерении контрольной серии оттискных материалов, полученных без дезинфекции образцов из «Take 1 putty», и последующей статистической обработки результатов измерений по методу дисперсионного анализа были получены следующие результаты: 5,0+0,5мкм. После погружения образцов в дезинфицирующий раствор электрохимически активированной воды, полученная разница между образцом и матрицей составила: 5,0+0,521мкм.

Результаты дисперсионного анализа показали, что различие незначительно и является статистически достоверным (табл.4).

Таблица 4

Измерение размеров образцов, полученных из отгискного материала

«Take 1 putty» (мкм)

Сумма 82,650 82,660

Среднее 5,500 5,521

Сумма квадратов 455,402 455,512

Сравнение полученных средних данных опытной серии с результатами измерений контрольной показало следующие: статистически достоверных различия в контрольной серии опытов составили 5,500мкм, а в опытной сери -5,521мкм, Анализ средних расстояний между средними величинами контрольного и опытного образцов показал, что статистически достоверные различия являются не существенными.

Результаты статистической обработки полученных данных, с использованием дисперсионного анализа показали, что статистически достоверные различия являются не существенными для контрольной и опытной серии.

Для определения шероховатости поверхности нами были исследованы поверхности образцов с помощью электронного микроскопа JEOL JSM 6380 LV и программы FemtoScan. Всего было изготовлено 10 образцов: 5 контрольных и 5 опытных, полученных после их дезинфекции, методом погружения в дезинфицирующий раствор электрохимически активированной воды. При визуальном осмотре различий между оттискным материалом опытной и контрольной серии не обнаружено, модели имеют четкие грани, поверхность их ровная, гладкая.

Для контрольной серии, средние значения шероховатости «Speedex putty» составили: Ra = 36,14; Rq = 352; Rsk = 51,4; Rku = 1,43. Для опытной серии оттиски отлиты после дезинфекции методом погружения в раствор электрохимически активированной воды, были получены значения: Ra = 37,28; Rq = 282; Rsk = 48,9; Rku = 0,807. Сравнение полученных результатов, не показывает достоверное уменьшение шероховатости поверхности оттискного материала опытной группы по сравнению с контрольными.

При визуальном осмотре контрольные оттиски из «Speedex сгеет» light body имели ровную, гладкую поверхность. Средние цифровые значения шероховатости для моделей контрольной серии составили: Ra = 25,6; Rq = 294; Rsk = 34,8; Rku = 6,13. В опытной серии эти значения соответственно равны: Ra = 25,7; Rq = 262; Rsk = 35,1; Rku = 8,56.

При сравнительном анализе полученных средних данных контрольной группы моделей с опытной группой выявлено, что достоверные статистические отклонения не являются статистически значимыми.

В данном опыте нами было получено 10 образцов: 5 из них из «Take 1» regular-set без дезинфекции и 5 образцов после дезинфекции в растворе электрохимически активированной воды. При сравнительном, анализе контрольных и опытных образцов не выявлено различий.

Шероховатость поверхности контрольной серии равнялась: Ra = 19,1; Rq = 250; Rsk = 26,2; Rku = 1,62. В опытной группе моделей были получены следующие параметры: Ra = 19,6; Rq = 261; Rsk=26,9; Rku = 1,74.

При сравнении полученных результатов, очевидно, что значения Ra, Rq, Rsk, Rku в опытной серии достоверно не изменяются по сравнению со значениями контрольной серии.

При визуальном осмотре образцы из «Take 1 putty» имели ровную, гладкую поверхность. Средние цифровые значения шероховатости для образцов контрольной серии составили: Ra = 34,2; Rq = 300; Rsk = 44,2; Rku = 0,703. В опытной серии эти значения соответственно равны: Ra = 34,8; Rq = 291; Rsk = 46,1; Rku = 1,36.

При сравнительном анализе полученных средних данных контрольной группы образцов с опытной группой выявлено следующее: статистически достоверные различия отсутствуют.

Анализ полученных данных показал, что среднестатистические отклонения по группам в контрольных и опытных образцах не имеют значительных отклонений.

Для определения химического состава поверхности были исследованы поверхности оттисков с помощью электронного микроскопа JEOL JSM 6380 LV и программы рентгеноспектрального микроанализа. Всего было получено 8 образцов, полученных после дезинфекции, методом погружения в дезинфицирующий раствор электрохимически активированной воды (4 опыта) и раствор глутаральдегида (4 опыта).

При сравнении спектрального микроанализа поверхности образца из «Speedex putty», обработанного глутаральдегидом по сравнению с поверхностью образца, обработанного анолитом, было отмечено образование таких химических элементов как: С1 — 0,31 %, Са — 1,88%, Mg — 1,23% по массе соответственно. На поверхности оттисков, выдержанных в анолите, эти примеси не регистрируются, но было отмечено наличие Na — 1,24 вес.%.

Для сравнительной оценки химического состава поверхности образцов из «Speedex сгееш» light body было проведено две серии опытов по 4 пробы каждый. В первой серии опытов проводилась обработка образцов глутаральдегидом в течение 15 минут, а во второй серии опытов раствором электрохимически активированной воды.

При сравнении спектрального микроанализа поверхности образца из «Speedex сгеет» light body, обработанного глутаральдегидом по сравнению с поверхностью образца, обработанного анолитом, было отмечено образование таких химических элементов как: С1 — 0,69 %, Са — 0,42%, Mg — 1,23% по массе соответственно. Выдержанные в электрохимически активированной воде образцы содержат из примесей только Na — 1,24 вес.%, а хлор и кальций в них отсутствует.

При сравнении спектрального микроанализа поверхности образца из «Take 1» regular-set, обработанного глутаральдегидом по сравнению с поверхностью образца, обработанного анолитом, было отмечено образование таких химических элементов как: С1 — 0,85%, Са — 1,68%, F — 0,44% по массе соответственно.

При сравнении спектрального микроанализа поверхности образца из «Take 1» regular-set, обработанного глутаральдегидом по сравнению с поверхностью образца, обработанного анолитом, было отмечено образование таких химических элементов как: С1 — 0,56%, Са — 0,21%, К — 0,01% по массе соответственно.

Выводы

1.Дезинфицирующий раствор электрохимически активированной воды не оказывает значимого негативного влияния на геометрическую стабильность оттисков из «Speedex putty», «Speedex creem» light body — группы С; «Take 1» regular-set, «Take 1 putty» — группы А. Сравнение полученных средних данных опытной серии с результатами измерений контрольной показало следующее: статистически достоверных различия в контрольной серии опытов составили 5,0 + 0,50мкм, а в опытной сери — 5,0 + 0,521мкм. Анализ средних расстояний между средними величинами контрольного и опытного образцов показал, что статистически достоверные различия являются не существенными, и составило от +0,001 мкм до +0,021мкм, различие статистически достоверно (Р>0,1). Таким образом, статистически достоверные отличия опытных образцов от контрольных не выявлены при измерении между металлической матрицей и оттискными материалами

2.Дезинфекция. раствором электрохимически активированной воды оттисков из «Speedex putty», «Speedex creem» light body — группы С; «Take 1» regular-set, «Take 1 putty» — группы А и последующий сравнительный анализ контрольных и опытных образцов не выявил существенных различий в качественной характеристике оттисков. При сравнении полученных результатов, очевидно, что значения Ra, Rq, Rsk, Rku в опытной серии достоверно не изменяются по сравнению со значениями контрольной серии

3.Сравнительная оценка химического состава поверхности оттисков из «Speedex putty», «Speedex creem» light body — группы С; «Take 1» regular-set, «Take 1 putty» — группы A «Take 1 putty», контрольной и опытной групп, с использованием программы рентгеноспектрального микроанализа показало образование таких химических элементов как: CI, Са, F и Mg при дезинфекции глутаральдегидом, а после обработки раствором анолита выше перечисленные химические элементы отсутствовали или были выражены в меньшем процентном соотношении по сравнению с контролем, что является положительным моментом наших исследований.

Практические рекомендации

1.Bce оттиски, полученные в стоматологических кабинетах, перед отправкой в зуботехническую лабораторию должны подвергаться обеззараживанию

2.Силиконовые оттискные материалы из «Speedex putty», «Speedex creem» light body — группы G; «Take 1» regular-set, «Take 1 putly» — группы A рекомендуется дезинфицировать раствором электрохимически активированной воды в течение 5 минут.

3.Рекомендуем применение раствора анолита для дезинфекции оттисков из силиконов, так как он не влияет на их качественные характеристики, а так же негативно влияет на аутотрофные клетки и не оказывает влияния на гетеротрофные.

4.Экологически безопасный, электрохимически активированный анолит имеет «время жизнИ», необходимое для процедуры обеззараживания. После использования он самопроизвольно деградирует без образования токсичных соединений — ксенобиотиков и не требует нейтрализации.

5.Анолит является эффективным дезинфицирующим средством, так как обладает широким спектром антимикробной активности, не вызывает привыкания к нему микроорганизмов при длительном применении, является безопасным при высыхании на поверхности, не выделяет токсичных элементов.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1.Лебеденко И.Ю., Каливрадасиян Э.С., Ибрагимов Т.И. и др. Руководство по ортопедической стоматологии. Протезирование при полном отсутствии зубов. Учебное пособие с грифом УМО. Москва, 2005.- 400 с.

2.Трофимук H.H. Сравнительный анализ влияния растворов аналита и глутарового альдегида на химические характеристики поверхности силиконовых оттисков/ H.H. Трофимук, П.И. Манеляк, Т.А. Гордеева и др.// Материалы XIII Международной научной конференции «Здоровье семьи XXI век» 26 апреля-03 мая 2009г., Египет, 2009. — С. 366-369.

3.Манеляк П.И. Влияние дезинфицирующего раствора аиолита на структуру силиконовых оттискных материалов/ П.И. Манеляк, Т.А.Гордеева// Системный анализ и управление в биомедицинских системах.- Т.8, №1,2009.-С.162-167.

4.Манеляк П.И. Влияние раствора электрохимически активированной воды на качественные характеристики силиконовых оттисков/ П.И. Манеляк, Т.А. Гордеева, Е.Ю. Каверина и др.// Материалы ХШ Международной научной конференции «Здоровье семьи XXI век» 26 апреля-03 мая 2009г., Египет, 2009. -С. 254-257.

5.Манеляк П.И. Проблема профессиональных рисков вирусных инфекций в ортопедической практике/ П.И. Манеляк//Сб. «Профилактика и лечение заболеваний в современных экологических условиях». Спец. выпуск «Научно-медицинского вестника Центрального Черноземья» по материалам юбилейной научно-практической конференции, поев. 85-летию ВГМА им. H.H. Бурденко, Воронеж, 2003.-С.33.

6.Манеляк П.И. Влияние дезинфицирующих растворов, получаемых методом электрохимического активирования воды на качество слепочных материалов/ П.И. Манеляк, Ю.О. Елькова// Сб. научных трудов. Современные проблемы клинической экспериментальной медицины, Воронеж, 2001. — С. 66.

7.Машкова Н.Г. Сравнительный анализ эффективности применения нейтрального анолита для дезинфекции оттисков из силиконовых материалов,

применяемых в клинике ортопедической стоматологии/ Н. 214

ГОУВГГО «Воронежская государственная технологическая академия» (ГОУВПО «ВГТА») Участок оперативной полиграфии ВГТА Адрес академии и участка оперативной полиграфии: 394000 Воронеж, пр. Революции, 19

Вироцид 10 литров — УМДИС: рынок грибов Восточной Европы

Описание

ВИРОЦИД, лат. – Virocid
Дезинфектант

Состав и форма выпуска: высококонцентрированное, поликомпозиционное дезинфицирующее средство с пенообразующей формулой Вироцид в качестве действующих веществ содержит четвертичные аммониевые основания: диэтилдиметилхлорид аммония 78 г/л; алкилдиметилбензилхлорид аммония 170,6 г/л, Глутаральдегид 107.25 г/л, Изопропанол 150 г/л, Кедровое масло: 20 г/л.

По внешнему виду препарат представляет собой прозрачную жидкость коричневого цвета со слабым специфическим запахом, легко смешивается с водой в любых соотношениях. Препарат выпускают в канистрах по 5 л и по 10 л.
Фармакологические свойства: Вироцид обладает широким спектром действия в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий (включая вегетативные и споровые формы), вирусов, грибов, дрожжей, плесеней и водорослей. Концентрация активных ингредиентов составляет 522 г/л. Инновационная формула дезинфицирующего препарата, включающая в его состав неионогенные ПАВ, смачивающие и комплексообразующие добавки, позволяет дезсредству работать в крайне тяжёлых условиях подразумевающих присутствие органических загрязнений, ультрафиолетовое излучение, низкие температуры и воду, жесткость которой составляет до 400 ppm (400 мг/л солей кальция). Вместе с тем, дезинфектант очень экономичен в применении. Характеризуется бережным отношением к обрабатываемым поверхностям, высокой стабильностью и безопасностью в применении. Его рабочие растворы нейтральны и не агрессивны.
Дозы и способ применения: Дезинфекцию рабочими растворами Вироцида проводят влажным (орошение, протирание, погружение) или аэрозольным способом. Эфирные масла, входящие в состав препарата, обеспечивают хорошие туманообразующие свойства при аэрозольном применении, улучшают равномерность обработки и качество сцепления с поверхностью. Применение аэрозольным способом, используя генераторы тумана, позволяет за короткое время равномерно обработать помещения больших размеров при минимальных трудозатратах. А благодаря хорошим пенным свойствам Вироцид может наноситься с помощью любого перогенерирующего оборудования, что облегчает контроль процесса обработки и увеличивает длительность контакта рабочего раствора с поверхностью.
Применение в грибоводстве: ​Дезинфекция камер выращивания грибов используется 0,5-1 л вироцида на 100 л воды для обработки чистой поверхности 20 тонной камеры и также вироцидом обрабатывают покровку перед выгрузкой камеры. Перед проведением дезинфекции следует проводить механическую очистку обрабатываемых помещений, а также обезжиривание поверхности: после механической очистки промойте поверхность с использованием моющих средств и просушите. Нанесите раствор Вироцида. Экспозиция после нанесения 30 минут.
​При дезинфекции инструментария: инструмент (ножи для резки грибов и другой инвентарь) замачивают в 2% моющем растворе в течение 10 минут, ополаскивают водой и помещают в 0,5–1% раствор Вироцида так, чтобы поверхность была полностью покрыта дезраствором. Экспозиция 30 минут. Ополаскивают инструмент дистиллированной водой.

Заправка дезбарьеров и дезковриков: используют 1-3% раствор Вироцида. Замена рабочего раствора проводится по мере загрязнения, 1 раз на 5 дней менять раствор в ковриках. Рабочий раствор Вироцида хранится 5 дней. В холодное время года, при отрицательных температурах воздуха рекомендуется использовать антифризовые добавки на основе пропиленгликоля, спиртосодержащих добавок (до 40%), кальция хлорида или поваренной соли (до 10–15%). При объемной дезинфекции помещения аэрозольным методом используют 20–25% раствор Вироцида из расчета 1 л. концентрата средства на 1000 м³.
Для обработки поверхностей можно использовать любой из удобных способов: с помощью перогенерирующего оборудования, орошением, протиранием. Средний расход рабочего раствора — 1 л на 4 м².
Для объемной дезинфекции помещений используют 5% раствор Вироцида из расчета 20 мл рабочего раствора на 1 м³.

Побочные действия: Средство оказывает местно-раздражающее действие на кожу и на слизистые оболочки глаз и обладает сенсибилизирующим действием.
Противопоказания: Повышенная чувствительность к компонентам препарата.
Особые указания: К работе с дезинфицирующим средством не допускаются беременные и кормящие грудью женщины, лица моложе 18 лет и имеющие противопоказания для работы с дезсредствами. Все работы с Вироцидом и его рабочими растворами необходимо проводить в спецодежде: хлопчатобумажном костюме или халате, резиновых перчатках, головном уборе, респираторе и в защитных очках. Во время работы запрещается принимать пищу, пить и курить. При приготовлении рабочих растворов следует избегать пыления и попадания порошка на кожу, в глаза и органы дыхания. По окончании работы лицо и руки следует вымыть теплой водой с мылом, рот прополоскать водой.
Условия хранения: Средство рекомендуется хранить отдельно от лекарственных препаратов, в местах, недоступных детям.

Срок годности — 3 года при условии хранения в невскрытой упаковке изготовителя при температуре от 5°С до 35°С.
Производитель: CID LINES, Бельгия

Безопасное и правильное использование дезинфектантов и дезинфицирующих средств на грибных фермах

 Дезинфицирующие средства и дезинфектанты – вещества, или смеси веществ обладающие способностью разрушать или подавлять рост вредных микроорганизмов, таких как бактерии, вирусы или грибки на неживых объектах и поверхностях. Эти продукты содержат приблизительно 300 различных активных компонентов и продаются в нескольких формах: спреи, жидкости, эмульсии, порошковые концентраты и газы.Дезинфицирующие средства включают средства, разрешенные для контакта с пищевыми продуктами и непродовольственные средства. Моющие средства, используемые для мойки оборудования пищевых производств, посуды на предприятиях питания и в питейных заведениях содержат дезинфицирующие средства, разрешенные для контакта с пищевыми продуктами. Эти средства важны, потому что они используются на участках, где производятся или хранятся потребляемые нами пищевые продукты. Непродовольственные дезинфицирующие средства используются для обработки оборудования по подготовке воздуха, для инокуляции мицелия, производства субстрата, производства и нанесения покровных материалов, для обработки стеллажей, поддонов, полов, стен, крытых переходов…

Цель дезинфекции состоит в том, чтобы убить как споры, так и мицелий таких грибковых болезнетворных микроорганизмов, как Trichoderma и Verticillium, так же как человеческих болезнетворных микроорганизмов, которые являются потенциальной проблемой безопасности пищевых продуктов. Кроме того, дезинфекция фермы после и между волнами урожая должна убить грибные споры и мицелиальные фрагменты наших грибов для контроля вирусных заболеваний, которые не очень часто встречаются на шампиньонных фермах. Но если они появляются, то становятся очень серьезной проблемой для ферм, выращивающих Portabella или использующих тоннели Фазы III.

Какие дезинфектанты должны использовать грибоводы? При выборе используемых дезинфицирующих средств производители грибов должны рассмотреть несколько факторов.  На первом месте при рассмотрении кандидатуры дезинфицирующего средства надо учитывать положение обрабатываемой зоны относительно плодоносящих грибов. Часто используемые дезинфицирующие средства в грибоводстве для дезинфекции грибных камер: Вироцид, Дезмарк, Надуксусная кислота, Перекись водорода 60%, Армекс.

Препаратами для дезинфекции обрабатывают: стены, полы, субстрат, покровные материалы, погрузочно-разгрузочное оборудование, инструменты сборщиц, ящики для сбора грибов, лотки и упаковочные пленки, грибное упаковочное оборудование и контейнеры, оборудование для водоподготовки, сита сушилок, варочные котлы и т.п. Т.е. для обработки любого оборудования, которое даже потенциально может контактировать с грибами – например, сортировочные столы или контейнеры для обрезков грибных ножек.

Для эффективности дезинфекции предварительно удалите всю грязь и органические отходы. Перед санацией полностью очистите или вымойте все поверхности с мылом или разрешенными моющими веществами, затем щедро ополосните их водой. Дезинфицирующие средства используют в резервуары для обработки погружением, ножные ванны и санитарные коврики часто заполняют одним типом дезинфицирующего средства.

Единственное обобщающее утверждение, которое мы смогли сделать:  любое органическое загрязнение  уменьшает эффективность любого дезинфектанта не зависимо от его, природы.

Остерегайтесь подделок! Товар, поставляемый нами, проверен десятками грибных ферм Украины, которые являются нашими постоянными клиентами!

ЭФФЕКТИВНАЯ ДЕЗИНФЕКЦИЯ – Компания Белфармаком

Выполнение зоогигиенических норм и правил является обязательным условием для биологической безопасности животноводческого предприятия. Особенно ужесточились требования к биобезопасности в связи с пандемиями АЧС, гриппа птиц и других инфекций. Дезинфекция является одним из важнейших мероприятий по поддержанию эпизоотологического благополучия, а качество дезинфекции напрямую зависит от эффективности применяемого дезинфицирующего препарата.

Среди ветеринарно-санитарных мероприятий, направленных на предупреждение заразных болезней животных и борьбе с ними важное место занимает дезинфекция. Дезинфектанты готовят из большого количества веществ, которые относятся к разным химическим группам. Наиболее широко используют следующие группы: спирты, фенолы, галогены, альдегиды, поверхностно-активные вещества (ПАВ), пероксидные соединения, соединения на основе хлоргексидина. Для дезинфекции наиболее широко используют этиловый и изопропиловый спирты. Механизм их действия заключается в денатурации микробных белков. Спирты в 60-90% концентрации активны в отношении вегетативных форм бактерий, грибов и оболочечных вирусов. Они не обладают моющими свойствами, могут повредить изделия из пластмассы и резины [1]. Фенолсодержащие препараты применяют достаточно ограниченно. Они обладают высокой активностью против вегетативных форм бактерий, грибов, оболочечных вирусов, умеренной активностью в отношении безоболочных вирусов. Эффективность бактерицидного действия фенолов зависит от концентрации раствора, однако фенолы плохо растворимы в воде [1-4]. К галогенам относятся хлор, фтор, бром, йод. Хлор и йод находят широкое применение благодаря широкому спектру антимикробного действия, но они требуют высокой точности в дозировке. Хлор обладает широким спектром действия и губительно действует на большинство микроорганизмов, имеет резкий запах, раздражает слизистые оболочки глаз и верхних дыхательных путей, вызывает коррозию металлов, отбеливает цветные вещи, имеет низкую стабильность при хранении, инактивируется органическими веществами и не обладает моющими свойствами. Йод известен как один из наиболее распространенных дезинфицирующих средств. Наиболее широко из соединений йода для дезинфекции используют йодоформ – это комплекс йода с носителями. Препараты йода обладают выраженной антибактериальной, противовирусной и противогрибковой активностью. Поверхностно-активные вещества в последние десятилетия получили достаточно широкое распространение. Их разделяют на катионные, анионные, амфолитные (амфотерные), неионогенные. Из них в самостоятельных дезинфицирующих веществах используют только катионные и амфотерные. Катионные ПАВ – это прежде всего четвертичные аммониевые соединения (ЧАС). Эти вещества обладают выраженным бактерицидным, фунгицидным, вируцидным и спороцидным действием. Важными свойствами ЧАС также является их низкая токсичность и отсутствие выраженного коррозионного действия. Благодаря чему дезсредства на основе ЧАС могут использоваться для дезинфекции не только животноводческих помещений, но и предприятий пищевой промышленности, в том числе и оборудования. Для альдегидов характерным является высокая цидная активность ко всем классам микроорганизмов, в том числе наиболее устойчивых (споро- капсулообразующих бактерий, безоболочечных вирусов). Из альдегидов более широко используются глутаральдегида, янтарный альдегид, формальдегид, глиоксаль. Альдегиды хорошо растворимы в воде, не имеют неприятного запаха, кроме формальдегида. Для альдегидсодержащих соединений характерна низкая коррозионная активность. Во многих странах использование формалина для дезинфекции запрещено, поскольку он обладает канцерогенными свойствами и имеет раздражающее действие на кожу, слизистые оболочки. Амфотерные ПАВы неагрессивные, отличаются хорошим пенообразованием. Средства имеющие в своём составе амфотерные ПАВы обладают хорошими моющими свойствами, в том числе разрушают биоплёнки образованные микроорганизмами. Пероксиды – кислородсодержащие препараты, которые являются сильными окислителями, образуют свободные радикалы, которые повреждают липиды клеточной мембраны, ДНК и другие важные компоненты микробной клетки. Однако в высоких концентрациях выраженные негативные качества-высокая тканевая токсичность с выраженным местно-раздражающим резорбтивным действием, вызывает коррозию металлов [5, 6].
Требования к современным дезинфицирующим средствам достаточно жесткие и им не отвечают старые монокомпонентные дезсредства. На сегодняшний день производят и используют многокомпонентные дезинфектанты с полифункциональными свойствами. Таким образом при использовании комбинированных дезсредств опасность возникновения устойчивости микроорганизмов к дезинфектантам почти невозможна [2, 6].
На рынке России есть большое количество дезинфицирующих средств отечественного и зарубежного производства. Большее количество этих средств являются многокомпонентными, они активны в отношении большинства патогенных микроорганизмов. И среди этого многообразия значительная часть дезсредств содержит в своём составе четвертичные аммониевые соединения и альдегиды.
Компания «Белфармаком» разработала и производит современный дезинфицирующий препарат Чистобел®, в состав которого входят 11,0 % глутарового альдегида, 17,0 % алкилметилбензиламоний хлорида, 8,0 % дидецилдиметиламоний хлорида и 3% амфотерных ПАВ. Комбинация альдегида, ЧАС и амфотерных ПАВ позволяет успешно использовать данный препарат для всех видов дезинфекции животноводческих помещений, предприятий пищевой, биологической и перерабатывающей промышленности, ветеринарные клиники, транспорт и другие объекты ветеринарного надзора.
Концентрация и соотношение действующих веществ в дезинфектанте Чистобел® позволяет обеззараживать объекты внешней среды обсеменённых патогенными микроорганизмами, в том числе устойчивыми. Экспериментально доказано, что для уничтожения микроорганизмов во внешней среде и предотвращения появления резистентных штаммов концентрация ЧАС в дезинфицирующем растворе должна составлять 0,01-0,05 % [7]. При применении Чистобел® в минимальной рекомендуемой концентрации 0,25 % концентрация ЧАС в дезрастворе составляет 0,06 %.
Панзоотия африканской чумы свиней (АЧС) в настоящее время является главным вызовом для ветеринарных служб Евразии. Не смотря на большую работу по изучению возбудителя данного заболевания средства специфического лечения и профилактики не разработаны. Поэтому единственным способом по недопущению заноса возбудителя АЧС на свиноводческое предприятие является строгое соблюдение ветеринарно-санитарных норм и правил, одним из важнейших из которых является дезинфекция. Известно, что вирус АЧС очень стоек во внешней среде. Поэтому не каждый дезинфектант гарантирует надёжное обеззараживание данного возбудителя. Исследования, выполненные во Всероссийском научно-исследовательском институте ветеринарной вирусологии и микробиологии г. Покров доказали эффективность использования Чистобел® в рекомендуемых производителях концентрациях для уничтожения вируса АЧС во внешней среде [8].
Заключение Таким образом, применение дезинфицирующих растворов на Чистобел® для обработки объектов ветеринарного надзора позволяет добиться благополучия по инфекционным заболеваниям животных и получения качественной продукции.

Автор Явников Н.В. 

ФГБОУ ВО Белгородский ГАУ, Кандидат ветеринарных наук, Общество с ограниченной ответственностью «Белфармаком»

Кислоты как дезинфицирующие вещества

Многие кислоты и ряд их производных обладают выраженным антимикробным действием.

Сильные неорганические кислоты (азотная, соляная, серная и др.) вызывают полное подавление жизнедеятельности вегетативных и споровых форм микроорганизмов. Для обеззараживания используют обычно теплые (313 К) водные растворы сильных кислот 2%-й концентрации.

Другие кислоты и их соединения, такие, как сернистая кислота, сернистый ангидрид, борная кислота и бура, обладают лишь слабым бактерицидным действием. В то же время некоторые органические соединения бора проявляют себя активными бактерицидами. Например, раствор треххлористого бора в комплексе с триметиламином и сульфанолом при концентрации активного начала 0,25% рекомендуют для обеззараживания объектов. Бактерицидное влияние на микрофлору оказывает также фосфорная кислота и ее соли, например, фосфат натрия. В 0,1%-м растворе фосфорной кислоты культура кишечной палочки погибает через 30 мин, в 0,25%-м растворе фосфата натрия при 295—305 К сальмонеллы погибают также через 30 мин, а в 1%-м растворе фосфата натрия стафилококк — в течение 20 мин.

Практическое использование неорганических кислот для проведения дезинфекционных мероприятий на пищевых производствах ограничено из-за сильной агрессивности кислот по отношению к конструкционным материалам технологического оборудования. Ряд органических кислот (муравьиная, уксусная, бензойная и др.) характеризуется ярко выраженным бактериостатическим действием. Однако используются они преимущественно при консервировании пищевых продуктов.

Из рассматриваемой группы широкое применение в дезинфекционной практике нашли альдегиды кислот — формальдегид, глутаральдегид и др. Применяют их как для влажной дезинфекции, так и в газообразном состоянии. Формальдегид и глутаральдегид (диальдегид) обладают широким спектром антимикробного действия, сильными бактерицидными и спороцидными свойствами; 2—5%-й раствор формальдегида рекомендуют для влажной дезинфекции поверхности, инфицированной патогенными микроорганизмами. В газообразном состоянии формальдегид применяют для обеззараживания производственных помещений из расчета 5—20 г/м³.

Антимикробное действие органических кислот возрастает в кислых растворах. Бактерицидное же действие кислот в целом определяется степенью их диссоциации на ионы, концентрацией ионов водорода и недиссоциированных молекул кислоты.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Таблица 1 | Рекомендации по дезинфекции и стерилизации | Библиотека руководств | Инфекционный контроль

Изменено из Rutala и Simmons. ^{15, 17, 18, 421} Выбор и использование дезинфицирующих средств в сфере здравоохранения является динамичным, и могут появиться продукты, которых не существовало на момент написания данного руководства. По мере появления новых дезинфицирующих средств лица или комитеты, ответственные за выбор дезинфицирующих средств и процессов стерилизации, должны руководствоваться продуктами, одобренными FDA и EPA, а также информацией в научной литературе.

1 См. Текст для обсуждения гидротерапии.

2 Чем дольше воздействие дезинфицирующего средства, тем больше вероятность того, что все микроорганизмы будут уничтожены. Следуйте утвержденному FDA заявлению о дезинфекции высокого уровня. Десятиминутного воздействия недостаточно для дезинфекции многих предметов, особенно тех, которые трудно чистить, поскольку в них есть узкие каналы или другие участки, в которых могут скапливаться органические материалы и бактерии. Двадцатиминутная выдержка при 20 ° C — это минимальное время, необходимое для надежного уничтожения M.tuberculosis и нетуберкулезные микобактерии с 2% глутаровым альдегидом. Некоторые дезинфицирующие средства высокого уровня имеют сокращенное время воздействия (например, ортофталевый альдегид через 12 минут при 20 ° C) из-за их быстрой активности против микобактерий или сокращенного времени воздействия из-за повышенной микобактерицидной активности при повышенной температуре (например, 2,5% глутарового альдегида при повышенной температуре). 5 минут при 35 ° C, 0,55% OPA в течение 5 минут при 25 ° C в автоматическом репроцессоре эндоскопа).

3 Трубки должны быть полностью заполнены для дезинфекции высокого уровня и жидкой химической стерилизации; Следует соблюдать осторожность, чтобы не захватывать пузырьки воздуха во время погружения.

4 При необходимости следует изучить совместимость материалов.

5 Следует учитывать концентрацию доступного хлора в 1000 ppm в случае разлива культур или концентрированных препаратов микроорганизмов (бытовой отбеливатель от 5,25% до 6,15%, разведенный 1:50, обеспечивает содержание доступного хлора> 1000 ppm). Этот раствор может вызвать коррозию некоторых поверхностей.

6 Пастеризация (мойка-дезинфекция) респираторного терапевтического или анестезиологического оборудования является признанной альтернативой дезинфекции высокого уровня.Некоторые данные ставят под сомнение эффективность некоторых установок для пастеризации.

7 При необходимости следует исследовать термостабильность.

8 Не смешивайте ректальные и оральные термометры на любом этапе работы или обработки.

9 По закону необходимо соблюдать все применимые инструкции на этикетках для продуктов, зарегистрированных EPA. Если пользователь выбирает условия воздействия, которые отличаются от тех, которые указаны на этикетке продуктов, зарегистрированных EPA, пользователь принимает на себя ответственность за любые травмы, возникшие в результате использования не по назначению, и потенциально может быть подвергнут принудительным мерам в соответствии с FIFRA.

Практическое руководство по использованию глутаральдегида и других дезинфицирующих средств высокого уровня

Практическое руководство по использованию глутаральдегида и других дезинфицирующих средств высокого уровня

Филиппа Коулза

Все дезинфицирующие средства высокого уровня, включая глутаральдегид, OPA, перуксусную кислоту перекись водорода, предназначены для уничтожения микроорганизмов и могут быть раздражителями и, возможно, сенсибилизаторами. Глутаральдегид был наиболее предпочтительным дезинфицирующим средством более 30 лет.Тем не менее, только в последние десять лет его использование стало регулируемым. Это побудило постепенный переход от глутарового альдегида к другим дезинфицирующим средствам. Практически не имея запаха, другие дезинфицирующие средства часто воспринимаются как безвредные, в результате чего медицинские работники не принимают надлежащих мер предосторожности при обращении с ними и работе с ними.

Новый обзор BIOSHARE скоро будет опубликован компанией Dow Chemical Company (в настоящее время объединенной с Union Carbide, поставщиком сырого глутаральдегида и OPA) под названием «Влияние на здоровье и меры предосторожности при обращении с о-фталевым альдегидом (OPA)».В нем говорится, что эти растворы (OPA) следует использовать в хорошо вентилируемых помещениях (т. Е. С десятью воздухообменами в час) или в вытяжном шкафу, а персонал, использующий растворы, должен носить соответствующие средства индивидуальной защиты (СИЗ), чтобы не допустить попадания в глаза и воздействие на кожу пара или жидкости ». BIOSHARE Литература также доступна для глутаральдегида и дает аналогичные рекомендации.

Американский национальный стандарт ¹

Независимо от того, какое дезинфицирующее средство высокого уровня вы выберете, основное протокол безопасности по сути такой же.Хотя изначально он был написан для глутаральдегида, технические требования к контролю и индивидуальной защите Американского национального института стандартов (ANSI) являются стандартом для медицинских учреждений. Они составляют основу стандартов, используемых OSHA и JCAHO. Цель данной статьи — рассмотреть и упростить ключевые вопросы стандарта ANSI и предложить некоторые практичные и недорогие решения для работы с дезинфицирующими средствами высокого уровня.

Три ключевых вопроса стандарта ANSI

Переход через стандарт ANSI может быть сложной задачей и часто приводит к бездействию.Его можно разбить на три основные области: вентиляция, СИЗ и обучение / повышение квалификации.

Вентиляция : Раздел 3.4.2 стандарта ANSI гласит, что «помещения, в которых проводится дезинфекция / стерилизация глутаровым альдегидом, должны быть достаточно большими, чтобы обеспечить адекватное разбавление пара, и должны иметь минимальную скорость воздухообмена, равную десяти воздухообменам в час. . » Это та же рекомендация, которую компания Dow Chemical дает для OPA и глутаральдегида.

Обычно единственными помещениями в медицинском учреждении, имеющими десять или более воздухообменов, являются операционные или изоляторы.Даже при десяти воздухообменах в час медицинские работники могут столкнуться с проблемой, если приточные и возвратные вентиляционные отверстия находятся под потолком. Свежий воздух может просто замкнуться на возвратное отверстие, не смешиваясь с воздухом в нижней части комнаты. Пары дезинфицирующего средства действительно могут вытягиваться вверх по лицу рабочего, усугубляя проблему.

В разделе 3.4.3 далее говорится, что там, где вентиляция недостаточна (менее десяти воздухообменов), «следует установить местный вытяжной шкаф для удержания паров глутарового альдегида.«Вытяжной колпак может быть выведен наружу, либо может использоваться вытяжной колпак без воздуховода, в котором используется угольный фильтр. Это снова та же рекомендация, которую Dow Chemical дает для OPA и глутаральдегида.

Полностью закрытый вытяжной колпак с вентиляцией или снаружи или через угольный фильтр (вытяжной шкаф без воздуховодов) не только защищает от паров, но также содержит брызги и разливы, которые являются основным источником паров.

Если в больнице не установлены полностью закрытые автоматические моечные машины или десять воздухообменов в час, при использовании глутарового альдегида или OPA следует использовать вытяжной шкаф с каналом или без него.

Средства индивидуальной защиты (СИЗ) : В разделе 4.2.2 стандарта ANSI это подробно рассматривается. Это, пожалуй, наиболее часто забываемая область просто потому, что она неудобна! Модель на Рисунке 1 показана в правильной одежде. Следующие рекомендации относятся ко всем дезинфицирующим средствам высокого уровня:

• Надевайте перчатки достаточной длины, чтобы вытянуть руку вверх, чтобы защитить предплечье или одежду от брызг или просачивания. Для глутаральдегида предпочтительны нитриловые перчатки.Для OPA лучше всего подходят перчатки из бутилкаучука или ПВХ. При случайном контакте латексные перчатки можно использовать с обоими химическими веществами; однако растворы OPA могут проникать через некоторые типы латексных перчаток менее чем за 15 минут.

• При работе с решениями OPA всегда надевайте брызгозащищенные моно-очки или оба защитных очка с боковыми щитками и закрывающими все лицо щитком. Многие защитные маски сами по себе не могут обеспечить полную защиту от загрязнения глаз, и их следует использовать в качестве дополнения для защиты кожи лица.

• Наденьте непромокаемый халат. Брызги OPA оставят на одежде стойкое черное пятно.

• Устройство для экстренной промывки глаз должно быть расположено в пределах 10 секунд пути или 100 футов пути. Один простой и недорогой способ выполнить это требование — установить небольшой промыватель для глаз, который подходит непосредственно к водопроводному крану.

Должны быть выполнены все четыре из вышеперечисленных рекомендаций; однако медицинские работники должны использовать защитную маску и перчатки.

Хотя нейтрализатор глутаральдегида и OPA не является строго частью СИЗ, он является важным средством обеспечения безопасности труда. Эти химические вещества сохраняют свою антимикробную активность и свой потенциал в качестве раздражителей и сенсибилизаторов после истечения срока их повторного использования. Работник, утилизирующий его, подвергается риску повышенного уровня воздействия, брызг и разливов или, что еще хуже, падения емкости. Добавление глицина может безопасно и быстро деактивировать как глутаральдегид, так и ОРА. Глицин также можно использовать для дезактивации разливов.

Обучение и непрерывное образование : Раздел 5 стандарта ANSI касается кадровых вопросов. Из-за высокой текучести кадров и увеличения нагрузки на пациентов о надлежащем обучении использованию дезинфицирующих средств часто забывают. Даже штатный персонал должен быть проинформирован о надлежащих процедурах. Это важно как для безопасности пациентов, так и для работников и включает следующее:

• Безопасность персонала, включая средства предотвращения воздействия глутаральдегида и других жидких химических стерилизаторов.

• Безопасное использование жидких стерилизаторов, включая применимые правила и инструкции на этикетках. Это включает проверку эффективности стерилизующих средств не реже одного раза в день с помощью соответствующей тест-полоски.

• Ведение надлежащего учета путем регистрации срока годности дезинфицирующего средства. Рекомендуется записать дату на ленте и прикрепить ее к емкости для замачивания.

• Убедитесь, что ваш персонал прочитал и понял руководство по эксплуатации конкретных дезинфицируемых инструментов.

• Правильное время замачивания. Для большинства этикеток из глутарового альдегида требуется 45-минутное время замачивания при 77 ° F. AORN, APIC, SGNA и ASGE в совместной позиционной бумаге рекомендуют 20-минутное время замачивания при комнатной температуре. ² Это общепринятая норма по всей стране.

Глутаральдегид

Уровни воздействия глутарового альдегида : Существует неясность в отношении допустимых уровней воздействия и способов их соблюдения.Ограничение OSHA составляет 0,2 частей на миллион (ppm), что обеспечивается в соответствии с их положением об общих обязанностях. В 1995 году Union Carbide снизила рекомендуемый уровень воздействия до 0,1 ppm. ACGIH рекомендовал гораздо более низкий уровень 0,05 промилле. Важно помнить, что это мгновенные уровни воздействия, и их нельзя превышать ни на один момент. Выливание свежего глутарового альдегида, удаление инструментов и утилизация использованного глутарового альдегида обычно на короткие периоды времени создают уровни, превышающие требования OSHA.

Мониторинг глутаральдегида : Существует четыре основных метода измерения воздействия глутаральдегида. Бейдж, трубка с силикагелем и фильтрующая кассета обеспечивают 15-минутный интегрированный взвешенный по времени образец. Проблема с этими методами заключается в том, что они вряд ли обнаружат мгновенные всплески уровня воздействия и приведут к ложному чувству безопасности, что уровни воздействия глутарового альдегида приемлемы. ⁴ Четвертый метод — это портативный измеритель, преимущество которого заключается в возможности измерения мгновенных уровней.Однако его ограничение заключается в обнаружении количеств ниже 0,05 ppm.

Последствия воздействия глутарового альдегида : Некоторые из побочных эффектов воздействия включают раздражение кожи, глаз и носа, головные боли, кашель и профессиональную астму. В более серьезных случаях рабочие объясняли использование глутарового альдегида множественной химической чувствительностью / идиопатической непереносимостью окружающей среды, что привело к судебным разбирательствам против некоторых медицинских учреждений. Вопреки распространенному мнению, нет никаких доказательств канцерогенности воздействия глутарового альдегида. ⁵

Вытяжные шкафы: простое решение : Большинство больниц установили закрытые автоматические моечные машины в своих отделениях CS и операционных. Это значительно снижает вероятность воздействия и устраняет брызги и разливы. Однако небольшие отделы и офисы в большинстве случаев дезинфицируют свои инструменты вручную в обычных лотках для замачивания с минимальной защитой от дыма и брызг или без нее.

Вытяжные шкафы, соответствующие требованиям стандарта ANSI и рекомендованные Dow Chemical для OPA и глутаральдегида, являются простым и доступным решением этой проблемы.Вытяжные шкафы обычно закрываются для улавливания паров во время обработки до того, как они распространятся по комнате. Воздуходувка отводит пары от рабочего. Подносы для замачивания и ополаскивания следует размещать рядом друг с другом в вытяжном шкафу, чтобы предотвратить попадание капель и воздействия при переносе инструмента из режима замачивания в ополаскиватель. Существует два типа вытяжных колпаков:

• Вытяжные вытяжные шкафы с вытяжкой напрямую наружу или в безрециркуляционную вытяжную систему вдали от людей и воздухозаборников.

• Вытяжные шкафы без воздуховодов направляют пар к фильтру, который химически инактивирует пары и возвращает чистый отфильтрованный воздух в комнату. Их преимущество в том, что они не требуют дорогостоящих воздуховодов или структурных изменений. Вытяжные шкафы без воздуховодов не отменяют требований к отрицательному и положительному воздушному потоку и не увеличивают требования к теплу / охлаждению помещения.

Типичные вытяжные шкафы громоздки и непрактичны для часто стесненных рабочих мест в большинстве офисов. Один производитель вытяжных шкафов без воздуховодов, работающий напрямую с производителями приборов и больницами, разработал большой ассортимент компактных вытяжных шкафов без воздуховодов для конкретных приборов.Они варьируются от небольших систем столешниц для замачивания трансвагинальных ультразвуковых датчиков до больших мобильных рабочих станций для гибких сигмоидоскопов и колоноскопов (рис. 1). Также были разработаны специальные формованные лотки для замачивания как малых, так и больших эндоскопов и ультразвуковых датчиков, что значительно снижает количество используемого дезинфицирующего средства. Полученная в результате экономия затрат оправдывает стоимость вытяжного шкафа, обеспечивая при этом защиту рабочего и отвечая требованиям OSHA и JCAHO.

Заключение

Обеспечение надлежащей защиты вашего персонала при работе с дезинфицирующими средствами высокого уровня не должно быть сложным процессом.Независимо от того, какое дезинфицирующее средство высокого уровня вы используете, убедитесь, что:

• персонал больницы использует надлежащие СИЗ.

• Вытяжной шкаф используется, если нет десяти или более воздухообменов.

• Персонал должным образом обучен использованию дезинфицирующего средства высокого уровня и полностью понимает процедуру обработки дезинфицируемого инструмента.

Филипп Коулз — президент PCI Medical в Дип-Ривер, штат Коннектикут.

Полный список ссылок можно найти на сайте www.infectioncontroltoday.com

Чтобы просмотреть полный список ссылок, нажмите здесь

Очистка и дезинфекция оборудования для эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Отчет рабочей группы Британского общества гастроэнтерологов, эндоскопический комитет

В 1988 году рабочая группа Британского общества гастроэнтерологов (BSG) опубликовала рекомендации по очистке и дезинфекции оборудования для гибкой желудочно-кишечной эндоскопии.1 Выводы Рабочей группы были опубликованы в виде руководства по надлежащей практике, которое с тех пор используют отделения эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Альдегидные препараты (2% активированный глутаральдегид и родственные продукты) были рекомендованы в качестве антибактериальных и противовирусных дезинфицирующих средств первой линии, а четырехминутное время погружения или контакта было рекомендовано как достаточное для инактивации вегетативных бактерий и вирусов (включая ВИЧ и вирус гепатита B (HBV)) .

После изменений в законодательстве по безопасности и увеличения раздражения и повышения чувствительности к альдегидным дезинфицирующим средствам среди медицинского персонала потребовалось внести изменения в эти рекомендации.Была созвана вторая рабочая группа, и в 1993 году был опубликован специальный отчет по дезинфицирующим средствам на основе альдегидов и здоровью эндоскопических установок .2. В нем были даны рекомендации по безопасному использованию глутарового альдегида и аналогичных альдегидсодержащих дезинфицирующих средств.

Обширный обзор инфекций после эндоскопии верхнего и нижнего гибкого желудочно-кишечного тракта и бронхоскопии был опубликован Spach et al в 1993 году.

В декабре 1994 года BSG созвала третью рабочую группу для определения того, как следует изменить рекомендации 1988 года.Эта Рабочая группа пришла к выводу, что большинство рекомендаций предыдущего отчета выдержали испытание временем. В Великобритании не было сообщений о передаче инфекции в результате ненадлежащей дезактивации желудочно-кишечных эндоскопов теми, кто следовал рекомендациям 1988 года. Большинство стран и производители дезинфицирующих средств в настоящее время рекомендуют погружение на 10 минут или более в 2% -ный глутаральдегид для рутинной эндоскопии. Это увеличивает запас прочности.

В недавнем бюллетене DB 9607 по обеззараживанию эндоскопов Агентства по медицинским приборам Министерства здравоохранения сообщается, что пользователь дезинфицирующего средства принимает время контакта / погружения, указанное производителями дезинфицирующего средства.4 Это должно быть подтверждено экспериментальными исследованиями, которые демонстрируют доказанную эффективность против микроорганизмов, значимых с точки зрения их устойчивости и их связи с конкретной эндоскопической процедурой. Ведущие производители 2% глутарового альдегида рекомендуют 10-минутное время контакта для вегетативных патогенов, включая Pseudomonas aeruginosa и вирусов, таких как ВИЧ и HBV.

В ответ на это Рабочая группа рассмотрела два аспекта, касающихся очистки и дезинфекции.

ВЫБОР ДЕЗИНФЕКЦИОННОГО СРЕДСТВА

Двухпроцентный глутаральдегид является наиболее широко используемым средством. Это эффективное дезинфицирующее средство, относительно недорогое и не повреждающее эндоскопы, аксессуары и оборудование для автоматизированной обработки, но проблемы со здоровьем и безопасностью вызывают серьезную озабоченность. Законный уровень воздействия глутаральдегида на рабочем месте в последнее время существенно снизился. Это сделало более сложным и дорогостоящим соблюдение Закона 1974 года об охране здоровья и безопасности на рабочем месте и, таким образом, соблюдение Правил по контролю за веществами, опасными для здоровья, введенных в 1988 году и пересмотренных в 1994 году.

Соответственно, Рабочая группа рассмотрела текущий статус глутаральдегида в эндоскопической практике и оценила альтернативные дезинфицирующие средства.

ОЧИСТКА И ДЕЗИНФЕКЦИЯ ЭНДОСКОПОВ

Непогружаемые эндоскопы практически исчезли из клинической практики в Великобритании, и в большинстве отделений желудочно-кишечной эндоскопии используются автоматические моечные машины / дезинфекторы. Рабочая группа изучила и попыталась определить оптимальные процедуры очистки и дезинфекции эндоскопов с особым упором на использование этих аппаратов.

Дезинфицирующие средства

Рабочая группа рассмотрела следующие агенты:

• 2% -ный глутаральдегид (например, Cidex, Asep, Totacide 28)

• Пераксусная кислота (например, Nu Cidex, Steris)

• Пероксидные соединения (например, Virkon)

• Диоксид хлора (например, Tristel, Dexit, Medicide)

• Четвертичные аммониевые соединения (например, Sactimed Sinald, Dettol ED)

• Спирты (например,этанол, изопропанол, промышленный метилированный спирт)

• Суперокисленная вода (например, Sterilox)

ГЛУТАРАЛЬДЕГИД

Двухпроцентный активированный щелочной глутаральдегид эффективен против вегетативных бактерий, грибов и большинства вирусов. инфекционные агенты, включая ВИЧ9 и энтеровирусы.7 , 10 ВГВ уничтожается через 2,5–5 минут.11-13 Хотя о возможной передаче вируса гепатита С (ВГС) сообщалось после колоноскопии, национальные рекомендации по очистке не соблюдались.14Данных об активности против ВГС нет, но вполне вероятно, что этот довольно хрупкий агент будет быстро уничтожен. Глутаральдегид разрушает высокие титры Mycobacterium tuberculosis в течение 20 минут и более низкие титры в течение 5–10 минут15. , 16 Mycobacterium avium intracellulare погибает через 60–75 минут 17 , 18 в то время как для некоторых бактериальных спор требуется три или более часов19. Хотя имеется мало доказательств, Helicobacter pylori , вероятно, быстро погибает под действием глутаральдегида, 20 но тщательная очистка важна, поскольку этот микроорганизм может быть защищен желудочной слизью.Прионы в основном присутствуют в головном мозге и нервной ткани пациентов с трансмиссивной губчатой ​​энцефалопатией, например с болезнью Крейтцфельда-Якоба. Выделение из крови и других тканей, вероятно, встречается редко. В настоящее время нет данных о передаче инфекции во время эндоскопии желудочно-кишечного тракта. Однако прионы устойчивы к дезинфицирующим средствам для инструментов, включая глутаральдегид, в концентрациях, обычно используемых для дезинфекции эндоскопов.21 Они также устойчивы к обычным процессам стерилизации, включая автоклавирование.Тщательная очистка важна и должна свести к минимуму риск заражения. Эндоскопии желательно избегать у пациентов с известным или подозреваемым прионным заболеванием.

Эти данные позволяют предположить, что предыдущие рекомендации по эндоскопии у пациентов со СПИДом или другими иммунодефицитными состояниями были чрезмерно осторожными. Было заявлено, что эндоскопы следует замачивать в 2% глутаровом альдегиде в течение одного часа перед их использованием у пациентов с ослабленным иммунитетом, чтобы предотвратить передачу инфекции.Самые последние данные о бактерицидном действии показывают, что 20-минутный период контакта с 2% -ным глутаровым альдегидом должен быть достаточным для дезинфекции до и после использования у пациентов с симптоматическим СПИДом или другими иммунодефицитами . Это время контакта также рекомендуется для чистых эндоскопов после использования у пациентов с известными или предполагаемыми микобактериальными инфекциями, но для M avium intracellulare .17 рекомендуется время воздействия 60–75 минут. , 18 Кроме того, Hanson et al 7 , 16 показали, что тщательная очистка эндоскопов удалила 3–5 log ₁₀ контаминирующих организмов.

Другие альдегиды часто используются в комбинации с другими дезинфицирующими средствами. Такие комбинации предназначены для усиления противовирусной и антибактериальной активности и уменьшения побочных реакций у персонала. Гигасепт (янтарный диальдегид и формальдегид) является наиболее широко используемым. Однако по своей микробицидной активности он уступает глутаральдегиду при использовании в концентрации, и требуется более длительное время контакта. Кроме того, у людей, подвергшихся воздействию, наблюдались токсические реакции. Казалось бы, преимущество этого агента перед 2% глутаровым альдегидом невелико.

Основная проблема, связанная с использованием альдегидных дезинфицирующих средств, заключается в побочных реакциях у работников эндоскопии.2 Такие реакции проявляются в виде дерматита (который может быть генерализованным), 22 конъюнктивита, 23 раздражения носа, 24 и астмы.25 , 26 Эти проблемы давно признаны Управлением по охране труда и технике безопасности (HSE).

Закон 1974 года об охране здоровья и безопасности на рабочем месте требует, чтобы работодатели обеспечивали, насколько это практически возможно, здоровье, безопасность и благополучие всех сотрудников.Закон также требует, чтобы сотрудники соблюдали меры предосторожности, необходимые для обеспечения безопасной работы. Правила о контроле за веществами, опасными для здоровья, 1994 г. (COSHH) требуют, чтобы работодатели оценивали риски для здоровья персонала, связанные с воздействием опасных химических веществ, таких как глутаральдегид, во избежание такого воздействия там, где это практически осуществимо, и иным образом для обеспечения надлежащего контроля. Предпочтение следует отдавать инженерным методам контроля, а не средствам индивидуальной защиты.

Несоблюдение COSHH, помимо того, что подвергает персонал риску, является правонарушением и влечет за собой наказание работодателя в соответствии с Законом о здоровье и безопасности на рабочем месте 1974 года.Существуют определенные критерии, касающиеся уровней воздействия. Они определяются как средний стандарт профессионального воздействия (OES) и максимальный уровень воздействия (MEL). OES — это атмосферный уровень, до которого необходимо снизить воздействие. Работодателям предоставляется некоторая свобода действий при условии, что установлен график до фактического достижения требуемых уровней. MEL — это воздействие, которое нельзя превышать, и работодатели должны снизить воздействие до уровня ниже этого уровня. До января 1998 глутаровый альдегид имел OES равный 0.2 частей на миллион (0,7 мг / м ³ ). Это было отменено, и Комиссия по охране труда рекомендовала MEL на уровне 0,05 ppm (восьмичасовое средневзвешенное значение (TWA)) и 0,05 ppm (15-минутный контрольный период). Это приведет к улучшению общих стандартов контроля, если это будет достигнуто. Эти рекомендации были даны в публикации HSE Eh50 / 98.

Отмена OES будет означать, что согласно правилам COSHH существует юридическое обязательство по достижению адекватного контроля.Поскольку безопасный уровень воздействия не может быть определен, ожидается, что воздействие следует контролировать до минимально возможного уровня.

COSHH обязывает работодателя проводить систематическую оценку риска воздействия глутарового альдегида для персонала и принимать меры для эффективного устранения воздействия. Поля FB1 и FB2 показывают действие, которое следует предпринять. Есть несколько аспектов правил COSHH, которые создают проблемы для отделений эндоскопии и операционных.

 Глутаральдегид используется в различных областях, включая дезинфекцию и санитарную обработку.В наш портфель входят продукты с активными концентрациями 25% и 50%, а также с регистрацией FCC и USP. Составы, содержащие глутаральдегид, удовлетворяют потребности различных отраслей промышленности благодаря своей высокой эффективности в широком диапазоне pH. Эти продукты не зарегистрированы для использования в качестве консервантов. 

 Внешний вид: Бесцветная жидкость 
 Запах: Фруктовый 
 Порог восприятия запаха: pH: 3,1 - 4,5 
 Точка замерзания: -18 ° C (-0 ° F) 
 Точка кипения (760 мм рт. Ст.): 100.7 ° С (213,3 ° F)
 
 Первичная химия: 1,5-пентандиол 

 Широкий спектр: уничтожает бактерии, дрожжи и плесень. 
 Функционален в широком диапазоне pH. 
 Отсутствует формальдегид, галогены, тяжелые металлы. 7-9 
 Превосходный пенетрант и удалитель биопленки 
 

 Экономическая эффективность использования глутарового альдегида 

 Дезинфицирующее средство для медицинского оборудования; закрепитель при дублении кожи; Дезинфицирующее средство для птицеводческих и свиноводческих хозяйств; химические туалеты; электронная микроскопия; рентгеновский снимок; сшивающий белок